为验证LeviCell™系统的性能表现，将PBMCs细胞重新悬浮在悬浮液中，并使用LeviCell™富集活细胞。使用PI将通道（上）（Live Channel）和通道（下）（Dead Channel）产物及未分选样本进行染色，并在 Sony^®SH800S 流式细胞分选仪上进行后续分析。

如下图所示，与未分选样本（LeviCell™分选前）相比，通道（上）（Live Channel）显示出近三倍的富集度（活力为 87%），而后者显示的活力为 31%。通道（下）（Dead Channel）中含有 96% 的死细胞。这明确证实了 LeviCell™技术平台能够最大程度地提高细胞活性及去除细胞碎片。

对细胞群表征无负面影响

为展示LeviCell™温和的处理过程（在不影响原始样本细胞群表征的情况下获得稳定得率），将PBMCs细胞悬浮在Levitation Agent™中，并用LeviCell™富集活细胞。部分原始样本单独分析。使用TruStain human Fc Block 将通道（上）（Live Channel）和通道（下）（Dead Channel）产物以及未分选样本在室温下封闭15分钟后，再加入抗-CD45 (PE)、抗-CD3 (FITC) 和抗-CD11b (APC) 各5 μL及抗-CD19 (PerCP- Cy5.5) 10 μL染色，置于冰浴中放置1小时。接着使用FACS缓冲液（含有0.5% BSA的PBS）清洗样本一次，再用Sony SH800S分析。

如图示，通道（上）（Live Channel）产物显示，在 CD45+ 淋巴细胞群中，CD3+、CD19+和CD11b+细胞数与分选前（Input）相当。所有类型的细胞都能保持稳定的活细胞产量充分证明了LeviCell™平台快速、温和、高效的分选技术能够保持原始细胞群表征。

不影响处理后活化状态

使用敏感型巨噬细胞进行分选和富集实验验证了LeviCell™能够分选细胞且不会影响细胞的活化状态。巨噬细胞可被极化为两种主要状态：M1（可促发炎症）和M2（可消除炎症）。分别使用IFN-γ (50 ng/mL) 和IL-4 (20 ng/mL) 处理巨噬细胞（在含有10% FBS的DMEM缓冲液中培养）24小时。使用未处理的巨噬细胞 (M0) 作为对照。

在进入LeviCell™时，巨噬细胞每种极性状态的初始细胞活力为20%。分别进行三次实验，观察到分选后富集的细胞活力为88% – 100%。富集后采用qRT – PCR处理来检测这些细胞中显示M1和M2活化状态的基因表达，以表明它们的活化状态没有受到LeviCell™分选的影响。

对于所有活化状态，在加入样本和分选后细胞间未观察到明显的基因表达差异。这表明，LeviCell™的分选过程足够温和，可在不影响巨噬细胞等敏感型细胞的极化状态下进行分选。